Immunzellsortierung

Immunzellsortierung bezeichnet die Trennung von Zellen einer Probe auf Basis spezifischer Zelloberflächenmarker, die mit Immunreagenzien wie Antikörpern erkannt werden. Ziel ist es, eine oder mehrere Zellpopulationen mit hoher Reinheit zu isolieren, während andere Zellen entfernt werden.

Die zwei wichtigsten Verfahren sind die immunmagnetische Sortierung (MACS) und die fluorezenszaktivierte Zellsortierung (FACS). MACS nutzt Antikörper, die an magnetische Träger gebunden sind. Positive Selektion bindet Zielzellen an magnetische Beads, sodass sie durch ein Magnetfeld abgetrennt werden. Negative Selektion entfernt unerwünschte Zellen, indem alle nicht-target Zellen abgezogen werden. FACS verwendet fluoreszenzmarkierte Antikörper und einen Durchflusszytometer-Sorter, der Zellen anhand mehrerer Marker trennt und gesammelt.

Anwendungen finden sich in der Grundlagenforschung, klinischer Diagnostik und Immuntherapie. Typische Zielzellen sind T-, B- und NK-Zellen sowie dendritische Zellen. Immunzellsortierung dient der isolierten Zellfunktionsanalyse, der Herstellung von Zellprodukten für Therapien (z. B. CAR-T) sowie der Reinigung von Proben vor Sequenzierung.

Typischer Ablauf ist Probenaufbereitung, Markerlabeling, Selektion, Sammlung der Zielfraktion und Qualitätskontrolle. MACS bietet schnelle, skalierbare Sortierung mit geringeren Kosten, liefert aber meist niedrigere Reinheiten und kann Aktivierung auslösen. FACS ermöglicht hohe Reinheit und Mehrparametrierung, ist aber teurer, langsamer und erfordert spezialisierte Ausrüstung.

Begrenzungen umfassen Markerabhängigkeit, Variation der Marker-Expression, potenzielle Aktivierungsfolgen und Kreuzreaktionen. In klinischen Anwendungen gelten GMP-konforme Prozesse, Validierung und Qualitätssicherung.