Fixierungsmittel

Fixierungsmittel sind chemische Substanzen, die in der Biologie, Histologie und Pathologie verwendet werden, um Gewebe und Zellen zu fixieren. Ziel der Fixierung ist es, Strukturen zu stabilisieren, Enzymaktivitäten zu stoppen und den Abbau durch Autolyse oder Keime zu verhindern, damit Proben für mikroskopische Untersuchungen erhalten bleiben.

Fixiermittel wirken durch unterschiedliche Mechanismen. Die häufigsten Fixierer bilden kovalente Quervernetzungen zwischen Proteinen und anderen Biomolekülen, wodurch die räumliche Struktur erhalten bleibt. Andere handeln durch Koagulation oder Ausfällen von Proteinen und Lipiden. Man unterscheidet grob fixative Substanzen, die koagulieren, von solchen, die quervernetzen.

Zu den gängigsten Fixiermitteln gehören:

- Formaldehyd bzw. Formalin/Paraformaldehyd: typische Lösungen enthalten etwa 4% Formaldehyd in Puffer. Gute Strukturerhaltung, geeignet für Lichtmikroskopie und Immunhistochemie, doch Epitope können maskiert werden.

- Glutaraldehyd: starke Quervernetzung, exzellente Ultrastruktur, häufig verwendet in der Elektronenmikroskopie; kann Immunantikörperbindung beeinträchtigen.

- Osmiumtetroxid: fixiert Lipide und Zellmembranen, vor allem in der Elektronenmikroskopie; hochgiftig und teuer.

- Koagulationsfixative wie Ethanol, Methanol oder Aceton: schnelle Fixierung, Lipide werden teilweise entfernt, Gewebe kann schrumpfen.

- Mischfixe wie Bouin- oder Helly-Lösung: effektiv, aber toxisch und aufgrund von Gewebsfärbungsproblemen seltener verwendet.

- Zinkhaltige Fixierer (z. B. Zinkformalin): verbessern oft die Antigenität für Immunhistochemie.

Anwendungen umfassen Histologie, Pathologie, Immunhistochemie und Elektronenmikroskopie. Die Wahl hängt von Probenart, gewünschter Struktur und Nachweisen ab. Sicherheit: viele Fixierer sind toxisch oder reizend; Arbeiten in Abzug, geeignete PSA und sachgerechte Entsorgung sind erforderlich.